【期刊信息】

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刊名:植物遗传资源学报
曾用名:植物遗传资源科学
主办:中国农业科学院作物科学研究所;中国农学会
主管:中华人民共和国农业部
ISSN:1672-1810
CN:11-4996/S
语言:中文
周期:双月
影响因子:1.434084
被引频次:35739
数据库收录:
中文核心期刊(2017);CA化学文摘(2013);CSCD中国科学引文库(2019-2020);统计源期刊(2018);期刊分类:农业

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植物环核苷酸门控离子通道的研究进展(2)

来源:植物遗传资源学报 【在线投稿】 栏目:期刊导读 时间:2021-06-16

作者:网站采编

关键词:

【摘要】图1 动物、植物环核苷酸门控离子通道(CNGCs)拓扑结构 2 植物CNGCs 离子选择与调节 CNGCs 是普遍存在植物体内的非选择性阳离子通道。研究发现,多个AtC

图1 动物、植物环核苷酸门控离子通道(CNGCs)拓扑结构

2 植物CNGCs 离子选择与调节

CNGCs 是普遍存在植物体内的非选择性阳离子通道。研究发现,多个AtCNGCs 与Ca2+渗透性紧密相关。通过异源表达系统发现AtCNGC2存在CNMP依赖性K+电流,对其他单价阳离子,如Li+、Cs+和Rb+也有渗透性[25],在维持细胞外低浓度Ca2+水平中发挥重要作用[26]。沉默番茄SlCNGC1和SlCNGC14基因导致细胞内Ca2+显著减少,表明SlCNGC1和SlCNGC14可能作为Ca2+通道发挥作用[27]。对大麦进行电生理分析,结果揭示HvCNGC2-3 通道是由Na+和K+同时存在而激活[28]。这种由2 种离子同时激活CNGC 通道的独特性质鲜见报道[21]。

CNGCs 通 道活性 受 CNMP 和 CaM 与 CNGC 可逆结合发生变构反应调节。cAMP 可激活通道引发胞内 Ca2+浓度增加,CaM 与 CNGC 相互作用调控 Ca2+浓度[29]。Zhang 等[29]运用电生理学试验发现,在非洲爪蟾卵母细胞异源表达系统中AtCNGC11/12 的活性不受CNMPs 影响,而与CaM 共表达时AtCNGC12通道活性显著增强,AtCNGC11 则无明显变化。结果表明,CaM 对CNGCs 通道活动和调节机制不同。研究表明,兰尼碱受体2(Ryanodine receptor 2,RyR2)存在不同形式CaM 的分子识别特征及调节方式。CaM 和 Ca2+-CaM 结合 RyR1 中存在 2 个有重叠的结合位点,双相调节RyR1 通道的活性[30]。植物CNGCs 存在 2 种 CaM 配体结合基序,即 CAmBD 和IQ CaM,不同的配体结合方式可能影响配体的调节功能。有研究提出,CaM 与 CNGCs 的 IQ 域 N 端结合并提供Ca2+依赖的反馈调控,从而精准地调节Ca2+信号[19]。此外,CNGCs 在不同组织和器官中可能以同源或异源聚体形式分别进行调控。Pan 等[19]研究证实CNGCs 和CaM 参与通道活动的调节和细胞中Ca2+浓度。CNGC8/CNGC7 与 CNGC18 形成的异源复合物通道与CaM2 结合,编码植物花粉管发育中Ca2+波动信号和通道活性。Tian 等[20]通过蛋白激酶BIK1 可特异磷酸化AtCNGC2 和AtCNGC4 组成的异源复合物的3 个位点,从而解除CNGCs 通道抑制状态通道,促进Ca2+内流,调控下游多个信号通路,为CNGC 的调节模式以及植物病理早期信号的感应提出了全新的作用范式。

3 植物CNGCs 生长发育功能

CNGCs广泛存在于植物细胞并参与重要的生理过程。植物CNGCs作为阳离子通道参与多个生理过程,目前已知拟南芥CNGCs的功能如图2所示[6]。

图2 拟南芥环核苷酸门控离子通道(CNGCs)的功能和离子选择性

植物CNGCs 在生殖发育过程中的作用已经被广泛研究,尤其是花粉管的生长和发育。梨PbrCNGCs 表达图谱的分析显示,PbrCNGC14-18(Ⅲ亚家族)、PbrCNGC2、PbrCNGC7-9(Ⅳ-B 亚家族)和PbrCNGC12 -13(Ⅰ亚家族)在花粉中特异表达[14]。已有研究表明,AtCNGC18 只在花粉粒中表达,AtCNGC7、AtCNGC8、AtCNGC16 仅在花粉发育过程中表达[31]。其中,AtCNGC18 在花粉管中的发育过程中起主导作用。在AtCNGC18 的CNBD 结构域点突变的植株中可观察到花粉管生长发育障碍,仍可透过Ca2+,但减弱了CNMP 的激活作用。此外,AtCNGC18 在原核系统中的表达导致钙离子浓度积累,可以推测花粉管生长机制可能与Ca2+相关,将CNMP 信号转化为Ca2+流变化,说明AtCNGC18 可能是花粉管发育和顶端生长的主要Ca2+渗透通道[32]。另一个参与植物生长发育的Ca2+可渗透重要通道是AtCNGC2,参与植物开花调控、开花转型,叶片衰老和叶片细胞钙离子流入[26,33]。AtCNGC10 参与调节开花时间、叶表面扩张、下胚轴伸长、重力刺激和淀粉积累等过程[34]。在相同的温度、光照和水的条件下,抗转录AtCNGC10 的开花时间比野生型植株提前10 d,其叶片积累淀粉含量几乎是野生型植物的两倍。目前已知AtCNGC10 可以在K+缺陷型大肠杆菌、低浓度K+酵母培养基中扩增,其抗转录植株K+含量低于野生型,推测AtCNGC10 在维持细胞内的K+平衡起重要作用[34]。关于植物的发芽和根生长目前只发现可能与AtCNGC3 相关。AtCNGC3缺失突变体在高盐的环境下种子发芽数量减少,种子质量明显下降[35]。拟南芥和水稻CNGCs 可能参与生长素依赖性调节,经生长素处理的拟南芥幼苗完全丧失 Ca2+以及酸碱度敏感性[36]。AtCNGC14缺失突变体与野生型植物的根相比,根生长和重力弯曲显著延迟,根毛钙信号异常,表明AtCNGC14 在调节根毛尖极性生长的过程中是必要的[37]。

对烟草CNGCs基因通过组织特异性表达模式分析发现,23个NtabCNGCs基因在不同的组织中差异表达,表明其在植物生长和发育中是不可或缺的。其中,NtabCNGC4在种子中表达水平最高,NtabCNGC32在幼叶中表达水平最高,NtabCNGC7主要在幼花中表达,NtabCNGC11在植物茎、根和成熟叶中表达水平最高[38]。在豆类植物中也有与CNGCs 相关的发现。对蒺藜状苜蓿根中3 种可渗透钙离子的CNGCs(MtCNGC15a/b/c)在根瘤菌和菌根共生体作用的研究中发现,这些通道可形成1 个具有钾离子渗透性通道的复合物调节细胞核Ca2+的释放[39]。


文章来源:《植物遗传资源学报》 网址: http://www.zwyczyxbzz.cn/qikandaodu/2021/0616/707.html


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